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n-辛基-β-D-吡喃葡萄糖苷（OG/OGP）：研究与生物技术中的非离子表面活性剂
n-辛基-β-D-葡萄糖苷简介
n-辛基-β-D-葡萄糖苷（OG/OGP），CAS 29836-26-8，分子式 C14H28O6，分子量约 292.4 g·mol⁻¹。OG是一种非离子型烷基葡萄糖苷：由一个 C8 疏水链（正辛基）通过糖苷键连接到 β-D-葡萄糖。它能够形成小而相对均一的胶束，并因其较高的临界胶束浓度（CMC，通常在水中约 18–25 mM）而著称。这一特性使得在溶解后或在重构至脂质体/纳米盘过程中，可以通过稀释或透析轻松去除OG。这也是OG在膜蛋白提取至重构工作流程中频繁出现的原因。
阿拉丁提供不同等级与纯度的OG / OGP
· O432561 100 mM 溶液
· O432559 ≥95% (HPLC)，50 % (w/v) 水溶液
· O105509 ≥97%
· O105510 蛋白分析级 ≥98%
核心理化性质
· 临界胶束浓度 (CMC)：
在室温水溶液中约 15–25 mM（常报道为 ~0.5–0.8% w/v，即约 0.53%）。
· 聚集数 (Nagg)：
在接近/高于 CMC 的标准水相条件下通常为 ~80–85；其值随浓度升高而增加。不同方法/缓冲液下可能有一定差异。
· 胶束大小/形状：
SANS 与分子动力学（MD）研究表明 OG 胶束并非球形，而是椭球形/长轴状；该几何特征在接近 CMC (~0.025 M) 时仍然存在。这对于蛋白–去垢剂复合物（PDC）的大小及 SEC 行为有重要意义。
· 温度行为：
OG 的一大特点是在宽温度范围内没有明显浑浊现象（不同于许多聚氧乙烯类表面活性剂）。
· 纯度注意事项：
商业化 OG 可能含有吸收紫外或带电杂质，这些杂质可能与蛋白结合；因此在结构或生物物理研究中，建议使用高纯度级别的 OG（或重新纯化）。
这些性质在实践中的意义
膜提取与溶解
· 优势： 在高于CMC时，OG能高效溶解膜及许多整合膜蛋白，同时将其维持在小胶束中—当需要强溶解力但又希望后续能顺利去除去垢剂时十分有用。
· 典型用法： 提取缓冲液常用 0.5–2% (w/v) OG；对于富含脂质的膜，常取较高浓度起始，随后在捕获后逐步降低。
· 示例： OG 广泛应用于多种酶、转运蛋白和受体；它曾是早期视紫红质重构研究和多种磷脂酰胆碱双层膜溶解/重构研究的主力去垢剂。
重构（脂质体、纳米盘）
· 优势： 由于CMC高，透析或稀释可迅速将OG浓度降至CMC以下，使胶束解体、蛋白重新嵌入脂质体或组装到纳米盘中，并减少低CMC去垢剂常见的动力学陷阱。吸附剂（如 Bio-Beads） OG的去除也非常高效。
稳定性
· 优势：OG为非离子型，且带有糖头基，因此比离子型去垢剂（如 SDS）和许多聚氧乙烯类更温和；许多蛋白在纯化和重构所需的时间窗口内保持功能。
· 提示： 与麦芽糖苷类去垢剂（如 DDM D100662, N475300）相比，OG在天数到达数周的时间尺度上可能较不稳定；但在需要易于去除（用于重构或结晶筛选）的情况下，OG 是理想选择。应根据稳定性和易去除性的权衡进行选择。
常见使用与技巧
· 保持高于 CMC 以溶解。
为确保可靠的胶束形成，建议至少运行在 CMC 的 2–3 倍浓度（例如 0.5–1% OG）。
· 透析/稀释法进行重构。
脂质/蛋白混合物起始浓度常为 ~1% OG；透析或稀释至低于 CMC (~0.5%) 触发双层形成与蛋白插入。吸附剂可加快去除。
· 缓冲液效应不可忽视。
离子强度与添加剂会改变 CMC 及胶束尺寸；如果实验敏感，应在具体缓冲条件（温度、盐浓度、pH）下实测 CMC。
参考文献
1. Anatrace. n-Octyl-β-D-glucopyranoside (OG) 技术数据表. 提供水溶液和盐溶液中的 CMC 值、聚集数估算、胶束分子量及使用说明。
2. Thermo Scientific. Octyl-β-D-glucopyranoside 产品说明书. 列出 CMC（约 23–25 mM）、聚集数（约 27）、胶束分子量（约 8 kDa）。
3. López, O., Cócera, M., Parra, J. L., & de la Maza, A. (1990). n-辛基-β-D-吡喃葡萄糖苷胶束的热力学与流体力学性质. Journal of Colloid and Interface Science, 137(1), 52–59. 报告了胶束分子量（约 25 kDa）、水合半径（约 2.35 nm）、聚集数（约 87）。
4. Vincent, M., 等. (1997). 利用 ITC 与 ²H-NMR 研究 n-辛基-β-D-吡喃葡萄糖苷在磷脂双分子层中的分配. Biophysical Journal, 73(1), 53–63. 解释了 OG 插入膜并溶解双层的热力学过程。
5. Helenius, A., & Simons, K. (1975). 去垢剂对膜的溶解作用. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Reviews on Biomembranes, 415(1), 29–79. 经典综述，首次系统介绍 OG 在膜溶解和重组中的应用。
6. Rigaud, J. L., & Lévy, D. (2003). 将膜蛋白重构至脂质体. Methods in Enzymology, 372, 65–86. 详细描述了 OG 在膜蛋白重构实验中的使用方法以及去除策略（透析、Bio-Beads 吸附）。
7. Popot, J.-L., & Engelman, D. M. (2000). 膜的去垢剂溶解：三阶段模型. Biochemistry, 39(13), 3533–3555. 提出了“三阶段模型”，解释了包括 OG 在内的去垢剂与脂质双层相互作用过程。
8. Hjelmeland, L. M. (1980). 非离子去垢剂对膜蛋白溶解作用：亲水–亲油平衡的作用. Journal of Biological Chemistry, 255(12), 5976–5982. 讨论了 OG 及相关葡萄糖苷类去垢剂的 HLB 值与蛋白相容性。