适用于流式细胞术
流式细胞术以单细胞为分析单位,结合多激光/多通道荧光检测,可在短时间内完成高维度的细胞表型、功能与微环境测定。多色与光谱流式的普及,使体系对缓冲组成、阻断策略、荧光团兼容性、固定透化与补偿/去卷积质量尤为敏感。针对流式用途优化并经用途化验证的试剂,能够在信号强度、背景抑制与谱学分离之间建立稳定平衡,提升重复性与跨平台可比性。
一、定义与特点
“适用于流式细胞术”的试剂是指围绕流式染色与检测流程开发并验证的配方体系,覆盖染色/洗涤缓冲、Fc阻断与背景抑制、存活染料、荧光抗体/化学探针、固定/透化试剂、单色补偿与性能质控微球等。核心特点是:
· 荧光信号稳定:低自发荧光、低光漂白、标记度(D/P)合理,强度线性可重复。
· 低非特异与高相容:Fc受体阻断、温和表活与蛋白稳定组分降低背景;与常见激光线/滤光片组兼容。
· 生物学安全与活性维持:低内毒素、无菌,维持细胞活率和形态;固定/通透流程兼容。
二、关键质量属性(CQAs)
质量属性 | 技术意义 | 检测/验证方法 |
荧光纯度与光谱匹配 | 确保通道分离清晰、补偿可解耦 | 光谱扫描;通道MFI与溢出矩阵评估 |
标记度(D/P)与活性 | 平衡信号强度与抗原亲和力 | UV-Vis计算D/P;抗原结合曲线对比 |
信噪比(S/N) | 反映灵敏度与背景水平 | 阳/阴群MFI比;同型/去抗原对照 |
批次一致性 | 门控与定量的跨批可重复性 | 新旧批并行;ΔMFI、CV与补偿矩阵差异 |
非特异结合 | 减少伪阳与阈值漂移 | Fc Block前后比较;同型对照背景率 |
光稳定性 | 上机期间信号保持 | 持续曝光衰减测试;时间序列MFI |
细胞相容性/活率 | 避免染色过程损伤细胞 | PI/7-AAD/固定可染活力染剂检测 |
缓冲体系稳定性 | pH/离子/蛋白浓度恒定,降低吸附 | pH、电导、蛋白定量;长期在用观察 |
无菌与内毒素 | 防止细胞刺激与假阳性 | 平板培养;LAL法(必要时) |
固定/通透兼容性 | 保持表位可识别与荧光稳定 | 不同固定/通透条件下的信号恢复度 |
三、适用范围
1.免疫细胞分型与表型分析
鉴定淋巴细胞、单核细胞、树突细胞等亚群的表面标志物(CD分子)表达。
2.功能检测
细胞增殖(CFSE、Ki-67)、活性氧(DCFH-DA)、细胞凋亡(Annexin V/PI)、细胞周期等。
3.信号通路与胞内抗原检测
通透后检测磷酸化蛋白、转录因子(pSTAT、NF-κB)等。
4.药物筛选与免疫反应监测
用于药物效应评估、免疫治疗监控(CAR-T、免疫检查点)、疫苗免疫应答分析。
5.质量控制与生产监测
细胞制备、培养及流式质控样的纯度与活率检测。
四、主要组成与功能定位
类别 | 常用试剂/配方 | 功能说明 |
缓冲体系 | PBS、HBSS、FACS buffer(PBS+1–2%BSA;0.05–0.1%NaN₃仅用于固定/分析样本,活细胞/分选禁用) | 保持渗透压、减少非特异结合(活细胞用无叠氮配方) |
核染剂 | 细胞活性与细胞周期分析 | |
固定/通透剂 | 固定形态或通透膜以染色胞内抗原 | |
洗涤与稀释液 | FACS buffer/PBS | 去除游离抗体与背景荧光 |
五、常见问题与解决方案
问题 | 可能原因 | 解决策略 |
信号弱 | 染料光漂、标记密度低、抗原表达弱 | 使用高亮度染料、增加孵育浓度或延长时间 |
背景高 | 非特异吸附、死细胞过多 | 增加Fc Block、去死细胞、优化洗涤步骤 |
光谱溢出 | 染料通道重叠、补偿矩阵不准 | 重设补偿珠,选择光谱分离度更好的组合 |
荧光漂白 | 强光暴露或未加抗光漂剂 | 避光操作、缩短上机时间、添加防漂剂 |
细胞聚团 | 缓冲液中Ca²⁺/Mg²⁺过高或温度不稳 | 使用无钙/镁PBS、控制温度4–8°C |
批次差异 | 抗体或染料批变更 | 新旧批平行验证,更新补偿与门控参数 |
六、常见问答
Q1:染色后信号太弱,阳性群难区分?
A:检查抗体稀释比例与孵育时间是否过短;确认样品中靶抗原表达量是否低;可尝试延长孵育(30→45 min),在4°C避光下操作,并确保洗涤缓冲中含1%BSA以防抗体吸附损失。
Q2:固定后荧光明显下降?
A:部分染料对醛固定敏感(尤以串联染料如PE-Cy5/PE-Cy7);FITC/APC多数可耐受温和固定。优先选固定兼容或可固定活性染料
Q3:死细胞比例高、群体聚集?
A:染色前保证细胞健康度(>90%);使用不含钙镁的PBS降低黏附;加入DNAse I(50 µg/mL)可减少聚团;上机前过滤样品,确保颗粒分散。
七、使用规范与储存建议
· 储存条件:2–8°C避光密封;冻融会导致染料失活或蛋白聚集。
· 操作前准备:抗体轻轻混匀后使用,不可剧烈振荡;样品与缓冲液温度一致。
· 避光与时效:荧光抗体配制后应立即上机检测;延时不超过2小时。
· 洗涤与稀释:推荐FACS buffer(PBS+1%BSA;0.05–0.1%NaN₃仅限固定/分析样本,活细胞/分选禁用),维持低背景。
· 仪器标准化:每日以校准微球检查激光强度、光谱响应和补偿系数。
八、阿拉丁产品优势
1.高纯度荧光标记与严格光谱验证
荧光抗体均经单峰发射验证,并提供激发/发射参数,确保通道补偿精确。
2.低背景配方优化
内含温和表活与Fc阻断组分,显著降低单核细胞、巨噬细胞类的非特异结合信号,适配复杂样品。
3.批次稳定与跨平台兼容
每批均进行ΔMFI、补偿矩阵与多平台比对(BD、Beckman、Sony),支持长周期面板使用。
4.高生物安全与无菌控制
采用0.22 µm过滤与低内毒工艺,兼容原代细胞、免疫细胞制备及临床前体系。
5.光稳定增强与长期保存
含抗光漂剂与蛋白保护体系,可在多次采样过程中维持信号强度稳定,降低长期上机漂移。
6.完整的验证与文件支持
每个产品提供COA、光谱图、批间比对数据与推荐补偿矩阵,符合科研及药物研发文档化要求。
九、同类相似级别对比
维度 | 流式细胞术级(Flow Cytometry) | 免疫组织化学级(IHC) | 免疫分析级(ELISA/CLIA) |
检测对象与读出 | 悬浮细胞单体,多参数荧光强度(MFI)、群体比例 | 组织切片定位,显色/荧光图像、评分 | 溶液相/固相信号,吸光度/发光读数 |
关键配方关注 | 荧光纯度、补偿相容、低非特异、活率维持 | 抗原修复、封闭与显色动力学、低背景 | 低本底、高S/N、线性与平台期稳定 |
试剂核心 | 荧光抗体、FACS缓冲、Fc Block、控制珠 | 修复液、封闭剂、聚合物二抗、底物 | 标记抗体/抗原、底物体系(TMB/ECL) |
典型质控 | 补偿微球、强度标准珠、同型对照 | 阳/阴对照片、显色曲线、形态评估 | 阴/阳/空白对照、标准曲线(R²) |
常见风险 | 光谱溢出、光漂、非特异、批次漂移 | 过修复/欠修复、脱片、边缘加深 | 自发色/自发光、基质效应、批次漂移 |
方法转移难点 | 面板设计与补偿矩阵复用 | 修复窗口与显色时间重现 | 标准线性与钳位误差控制 |
结果形态 | 单细胞分布与门控图 | 图像定位与强度评分 | 曲线/终点读数(OD、RLU) |
适用于流式细胞术(Flow Cytometry)的试剂,不仅要求化学纯度高,更强调光谱精确、信号稳定与实验可重复性。阿拉丁通过严格的荧光标记控制、跨平台性能验证及低背景配方优化,使每一次细胞分析都具备高分辨率与数据一致性。
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